【생물학】 10-2강. 후성유전체 시퀀싱

10-2강. 후성유전체 시퀀싱(epigenomics sequencing)

 

추천글 : 【생물학】 10강. 게놈 프로젝트와 시퀀싱 기술 

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1. 종류 1. gene function 식별 [본문]

2. 종류 2. transcription regulation 식별 [본문]

3. 종류 3. post-translational regulation 식별 [본문]

4. 종류 4. programmable cell function [본문]

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a. 후성유전학 라이브러리

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1. 종류 1. gene function 식별 [목차]

⑴ Perturb-seq

① 1^st. 여러 종류의 gRNA library를 Cas9-expressing cell을 처리

○ CRISPR-Cas9을 사용함으로써, 각 세포에서는 gRNA의 종류에 따라 다양한 변화(perturbation)가 발생

○ 필터링 후 250만 개 이상의 세포가 있어야 함 

○ perturbation 당 평균 100개 이상의 세포가 있어야 함

○ 세포당 10,000개 정도의 UMI가 있어야 함 

② 2^nd. gRNA와 mRNA를 모두 탐지하는 시퀀싱 기술을 사용 scRNA-seq 

○ 공간전사체로 Perturb-seq을 구현한 연구도 보고됨 (ref)

③ 3^rd. gRNA를 발현하는 세포별로 그룹핑 : 자연스럽게 perturbation 조건별로 세포들이 그룹핑

④ 4^th. gene 기능 식별 

○ 전제 : 비슷한 기능을 하는 gene끼리는 비슷한 expression 패턴을 보일 가능성이 높음

○ 알 수 있는 결과 1. perturbation에 따른 유전자 발현 변화

○ 알 수 있는 결과 2. 유전자 변이에 따른 perturbation 영향 차이

 

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Figure. 1. 검증 실험을 포함한 Perturb-seq의 일반적인 모식도

 

 

2. 종류 2. transcription regulation 식별 [목차]

⑴ BS-seq(bisulfite sequencing)

① bisulfite를 처리하여 methylation 패턴을 결정

② epigenomic profilig을 가능하게 함

⑵ ChIP-seq(chromatin immunoprecipitation sequencing)

① DNA-associated protein의 결합 자리를 알기 위해 DNA 시퀀싱과 ChIP(chromatin immunoprecipitation)를 결합

② 1^st. 단백질(예 : 전사인자)과 DNA가 cross-link 돼 있음

③ 2^nd. sonication을 통해 DNA를 파괴 : cross-link 된 DNA는 파괴되지 않음

④ 3^rd. bead가 부착된 항체를 첨가하여 특정 단백질 및 그와 연결된 DNA를 면역 침전

⑤ 4^th. 침전물로부터 DNA를 분리한 후 염기서열을 알기 위해 sequencing을 진행

⑥ 최종적으로 전사인자 등의 binding site를 알 수 있음

 

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Figure. 2. ChIP-seq 과정

 

⑦ 응용 1. ChIP-chip 

⑧ 응용 2. ChIP-PET 

⑨ 응용 3. ChIA-PET 

⑶ Hi-C sequencing (high throughput chromatin conformation capture sequencing)

① 염색체 상에서 가깝게 인접한 염기서열을 조사

② 이를 통해 핵 내 염색체의 3차원 접힘 구조를 볼 수 있음

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Figure. 3. Hi-C-seq 과정

 

⑷ DNA ticker tape (prime editing)

① 1^st. 맨 처음에는 첫 번째 사이트만 활성화 돼 있음

② 2^nd. 첫 번째 이벤트가 일어나면 두 번째 사이트가 활성화됨

③ 3^rd. 이런 식으로 시계열적 분자적 이벤트를 기록할 수 있음

⑸ ENGRAM(enhancer-driven genomic recording of transcriptional activity in multiplex)

① synthetic enhancer와 연결된 perRNA를 이용

② 신호전달의 순서와 강도를 기록할 수 있음

③ 레퍼런스 : Chen et al., bioRxiv (2021) 

⑹ Tag

① MuLTI-Tag 

○ direct barcode conjugation을 통해 multiplexing에서의 crossover를 최소화

② multi-CUT&Tag

○ barcoded Tn5/pA-antibody complex를 이용

○ mark들의 colocalization 등을 확인할 수 있음 

③ spatial-CUT&Tag 

○ 조직 상에 공간적으로 히스톤 수식 및 염색체 상태를 보여줌 

⑺ ATAC-seq (assay for transposase-accessible chromatin with sequencing)

① 개요

○ 정의 : 진정염색질 부분을 표시해 주는 시퀀싱 기법

○ pseudo-expression : 진정염색질은 gene expression이 있는 영역으로 추정할 수 있음

② 종류 1. bulk ATAC-seq

○ 단계 1. 핵 분리(nuclei isolation)

○ 단계 2. Tn5 transposase 처리 : 이는 염색체에서 응축이 덜한 open region을 잘라 DNA sequence tag를 삽입

○ 단계 3. amplification & sequencing

○ 단계 4. 데이터 분석 

③ 종류 2. scATAC-seq

○ cell type에 특이적인 CRE를 정의하여 regulatory TF를 규명하고 질환 및 형질과 관련된 cell type을 식별

○ GWAS variant를 해석할 때 scATAC-seq이 활용됨  

⑻ NOMe-seq (nucleosome occupancy and methylome sequencing)

① TF가 결합하는 뉴클레오솜 고갈 영역(NDR)을 정의

② 염색질과 상호작용하는 전사인자의 종류를 알 수 있음 

⑼ DNaseI-seq

① 염색질과 상호작용하는 전사인자의 종류를 알 수 있음 

⑽ MNase-seq

⑾ FAIRE-seq

⑿ MBD-seq

 

 

3. 종류 3. post-translational regulation 식별 [목차]

⑴ scRibo-seq

① 각 single codon 별 ribosomal occupancy를 측정 

② 1^st. FACS 및 lysis 

③ 2^nd. nuclease footprinting : MNase nuclease → inactivation → release of footprints

④ 3^rd. small-RNA library 생성 : end repair → 3' ligation → 5' ligation → cDNA synthesis → indexing PCR 

⑵ STAMP-RBP

① RBP(RNA binding protein)을 찾기 위해 scRNA-seq을 이용

② 1^st. RBP에 APOBEC를 붙임

③ 2^nd. APOBEC와 mRNA가 붙은 지점에서 C-U editing이 되도록 함 : 즉, C 염기를 U 염기로 치환

④ 3^rd. RNA-seq

⑤ 4^th. SAILOR를 이용하여 C-U editing이 일어난 지점을 식별

⑥ long read sequencing을 이용하여 isoform-specific binding profile을 식별할 수도 있음 

 

 

4. 종류 4. programmable cell function [목차]

⑴ RADARS 

① 1^st. target transcript가 있을 때 dsRNA를 형성하여 ADAR로 하여금 A-C editing이 일어나게 함

② 2^nd. 위 editing으로 인해 GFP, caspase 등 cellular behavior가 일어나도록 함

⑵ LADL(light-activated dynamic looping) 

① photo-activatable gene expression의 예시 중 하나

 

입력: 2022.01.10 00:03

수정: 2023.01.28 23:12